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SatGreen qPCR Master Mix for HRM(2×)

产品货号 产品规格 目录价 库存 数量
M10201 20 µL×100 T ¥388.00 99
M10201 20 µL×500 T ¥718.00 100
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效能等同Biotium EVAGREEN® DYE-BASED QPCR MASTER MIXES
本文中EVAGREEN® 为Biotium的商标及注册商标

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实验操作小课堂

  • 问:基因组DNA模板量和纯度有什么要求?
  • 答:在20 μL反应体系中,基因组DNA模板量一般小于100 ng。模板纯度要求为OD260/OD280在1.6-2.0之间,OD260/OD230在1.5-2.0之间。
  • 问:进行HRM分析时,对样品的基因组DNA纯化方法有什么建议?
  • 答:尽可能对HRM分析的所有样品使用相同的基因组DNA纯化方法,避免由于不同提取方法中使用的洗脱缓冲液的不同组成而引入差异。
  • 问:可以用50 μL体系吗?
  • 答:HRM具有很高的灵敏性,在条件允许的情况下可使用50 μL反应体系,大的反应体系可提高反应重复性,减少实验误差对熔解曲线的负面影响。
  • 问:HRM分析中,引物设计有哪些要点?
  • 答:较短的PCR产物可提高HRM的分辨率。设计PCR引物时,尽量保持产物长度在80-300之间。对于单核苷酸多态性(SNP)分析,建议使用80-120个碱基对的PCR产物,且SNP位点尽量处在PCR产物序列中间位置。虽然较大的产物也能分析,但通常分辨率较低,因为单个碱基的变化对100个碱基对的PCR产物的熔解行为的影响比对350个碱基对的PCR产物的影响更大。
  • 问:所有检测实验都需要设置无模板对照吗?为什么?
  • 答:所有检测实验中都应包括一个无模板对照(NTC),可检测潜在的污染。
  • 问:单核苷酸多态性基因分型实验,对基因组DNA对照有什么要求?
  • 答:对于单核苷酸多态性基因分型实验,每种可能的基因型(野生型、杂合子、变异型)至少需要一个已知基因型的基因组DNA对照。
  • 问:扩增时对PCR循环次数有什么要求?
  • 答:扩增时要设定足量的PCR循环次数,使所有样本都达到PCR的平台期,以确保产生足量的扩增产物用于HRM分析。因为PCR产物量会影响PCR产物的熔融温度。
  • 问:M10201与M10302,在应用上有什么区别。
  • 答:M10201:需要HRM分析(基因突变检测(SNPs、插入缺失)、基因分型(如等位基因区分)、甲基化分析、非特异性扩增鉴别)、高灵敏度、高精度定量需求(如稀有mRNA表达、微量病原体)。M10302:常规qPCR定量,无需高分辨率熔解曲线(HRM)分析。

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SatGreen qPCR Master Mix for HRM(2×)
SatGreen qPCR Master Mix for HRM (2×)

2×预混Mix,按需求释放机制,安全稳定,专用qPCR/HRM分析

  • 储运条件 -20 ℃避光保存,冰袋运输。
  • 产品简介

    SatGreen qPCR Master Mix for HRM (2×)是一款适配实时荧光定量PCR与高分辨率熔解曲线(HRM)分析的预混试剂,核心组分为优化配比的2×SatGreen Master Mix for HRM,可实现qPCR扩增与HRM分析“一步式”衔接。其核心染料SatGreen基于“按需释放”机制设计,为无序列偏好性的新型dsDNA饱和染料,相较传统SYBR Green I类染料,在极低抑制PCR扩增的同时避免染料重排,搭配ROX Reference Dye校正孔间荧光误差。该产品有效解决传统试剂盒抑制性强、HRM分辨率不足的痛点,荧光信号强、背景噪音低,可清晰区分单碱基差异,广泛适用于SNP 分析、突变基因扫描、甲基化状态分析等场景,为分子诊断、遗传研究及临床科研提供高精准技术支撑。

  • 应用范围 实时荧光定量PCR,高分辨率熔解曲线分析,SNP分析,未知突变基因扫描等基因多态性与突变检测类研究等
  • 产品特点

    高灵敏度:精准探测DNA序列细微差异,能识别单碱基变化,适合HRM分析;

    稳定性优异:对PCR扩增抑制性极低,支持快速PCR流程高效进行;

    高安全性:几乎不可穿透完整的细胞膜,无致突变性,比SYBR Green I更安全;

    按需求释放:随扩增进程精准供能,支撑高浓度饱和结合;

    方便便捷:2×预混液,用于快速循环实验;

    兼容性好:与SYBR Green I光谱相似,可直接替代无需更换仪器和更改步骤;

  • 产品参数

    Ex/Em:500/530 nm (结合DNA);

  • 产品组分

    组分

    20 μL×100 T

    20 μL×500 T

    A. 2× SatGreen Master Mix for HRM

    1 mL

    5×1 mL

    B. 10× ROX Reference Dye

    0.2 mL

    1 mL

    C. RNase-Free Water

    1×1.7 mL

    3×1.7 mL

    注:100 T按照20 μL反应体系计算;
    注:组分A包含SatGreen染料,dNTP,PCR buffer(含Tris和MgCl2),热启动Taq聚合酶。

  • 结果判读

    图1.高分辨率熔解曲线

    结果判读:umDNA、hmDNA和mDNA的高分辨率熔解曲线,结果表明hmDNA和mDNA的Tm值显著低于umDNA。

    图片引自文献《Mechanism for the substrate recognition by a eukaryotic DNA N6-adenine methyltransferase complex》

    (DOI: 10.1038/s41467-025-63738-y)
  • 问:基因组DNA模板量和纯度有什么要求?
  • 答:在20 μL反应体系中,基因组DNA模板量一般小于100 ng。模板纯度要求为OD260/OD280在1.6-2.0之间,OD260/OD230在1.5-2.0之间。
  • 问:进行HRM分析时,对样品的基因组DNA纯化方法有什么建议?
  • 答:尽可能对HRM分析的所有样品使用相同的基因组DNA纯化方法,避免由于不同提取方法中使用的洗脱缓冲液的不同组成而引入差异。
  • 问:可以用50 μL体系吗?
  • 答:HRM具有很高的灵敏性,在条件允许的情况下可使用50 μL反应体系,大的反应体系可提高反应重复性,减少实验误差对熔解曲线的负面影响。
  • 问:HRM分析中,引物设计有哪些要点?
  • 答:较短的PCR产物可提高HRM的分辨率。设计PCR引物时,尽量保持产物长度在80-300之间。对于单核苷酸多态性(SNP)分析,建议使用80-120个碱基对的PCR产物,且SNP位点尽量处在PCR产物序列中间位置。虽然较大的产物也能分析,但通常分辨率较低,因为单个碱基的变化对100个碱基对的PCR产物的熔解行为的影响比对350个碱基对的PCR产物的影响更大。
  • 问:所有检测实验都需要设置无模板对照吗?为什么?
  • 答:所有检测实验中都应包括一个无模板对照(NTC),可检测潜在的污染。
  • 问:单核苷酸多态性基因分型实验,对基因组DNA对照有什么要求?
  • 答:对于单核苷酸多态性基因分型实验,每种可能的基因型(野生型、杂合子、变异型)至少需要一个已知基因型的基因组DNA对照。
  • 问:扩增时对PCR循环次数有什么要求?
  • 答:扩增时要设定足量的PCR循环次数,使所有样本都达到PCR的平台期,以确保产生足量的扩增产物用于HRM分析。因为PCR产物量会影响PCR产物的熔融温度。
  • 问:M10201与M10302,在应用上有什么区别。
  • 答:M10201:需要HRM分析(基因突变检测(SNPs、插入缺失)、基因分型(如等位基因区分)、甲基化分析、非特异性扩增鉴别)、高灵敏度、高精度定量需求(如稀有mRNA表达、微量病原体)。M10302:常规qPCR定量,无需高分辨率熔解曲线(HRM)分析。
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    质量   浓度   体积   分子量 *
    = × ×
    质量   浓度
    = ×
    体积   分子量 *
    ×
    浓度 (start) × 体积 (start) = 浓度 (final) × 体积 (final)
    × = ×
    浓度 (start) × 体积 (start) =
    × =
    浓度 (final) × 体积 (final)
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    分子量:g/mol
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