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CellTiter-Live™ 3.0 Cell Viability Assay

产品货号 产品规格 目录价 库存 数量
C20401 10×1000 T ¥88235.00 100
C20401 5×500 T ¥23529.00 100
C20401 500 T ¥5294.00 100
C20401 100 T ¥1176.00 100
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效能等同于Promega CTG-CellTiter-Glo® 2.0 Cell Viability Assay(G9241)
本文中CellTiter-Glo®为Promega的商标及注册商标

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实验操作小课堂

  • 1.问:结果检测时,可以在荧光显微镜下观察拍照吗?
  • 答:不可以。本试剂盒检测原理是化学发光法,需要用具有化学发光检测功能的仪器才能检测。
  • 2.问:为什么检测实验结果时,不需要选择检测波长?
  • 答:化学发光反应的检测指标并不来自样品本身。检测到的光信号,是作为反应的副产物产生的。在萤光素酶反应中(生物发光反应),萤光素酶催化底物转化为产物,反应中的一部分能量,以光的形式释放。我们检测中用到的样品,通常是真核生物来源的细胞或组织,来自样品自身的背景光非常低。这意味着,在萤光素酶检测中不需要滤除来自样品的任何光。萤光素酶反应的确会在某个特定波长下有最大的发光强度,但是萤光素酶反应的发光光谱通常都相当宽,在许多波长下都有发光。因此,如果只选择在最大波长处检测发光,过滤掉其他发光信号,意味着检测会丢掉很多信号,丢失灵敏度。所以大多数发光检测仪器会在检测发光反应时收集整个可见光谱(大约为380-780 nm)中的所有光。来确保在检测背景值低的同时有较高的灵敏度。
  • 3.问:没有做标准曲线,如何换算相对活力?
  • 答:可以将空白未加药处理组的检测结果设置成 1 或者 100%,然后将给药组获得的RLU 值和空白组的 RLU 值相比计算相对活力。

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CellTiter-Live™ 3.0 Cell Viability Assay
CellTiter-Live™ 3.0 细胞活力测定试剂盒

10 min一步加样,ATP辉光3-7 h不漂,适合高通量检测和低细胞数检测

  • 储运条件 -20 ℃避光保存,冰袋运输
  • 产品简介

    CellTiter-Live™ 3.0细胞活力检测试剂盒基于ATP生物发光法核心原理,以萤火虫荧光素酶催化反应生成稳定光信号,信号强度与活细胞ATP含量呈极佳线性关系(R²≥0.999),ATP检测作为FDA与ICH公认的细胞活力金标准,可客观反映活细胞数量与代谢状态。相较传统MTT、CCK-8比色法,本试剂盒检测灵敏度提升10-100倍,最低可检测数十个活细胞,且采用“加样-混匀-读数”一步法,10分钟内即可完成96/384孔板检测,无需洗涤换液,兼容含血清、低浓度DMSO的常规培养基。产品适用于高通量药物筛选、细胞毒性与增殖检测、肿瘤药敏实验及细胞治疗放行检测等场景,实现“当天染板、当天出报告”,为科研与产业化应用提供高效可靠的技术支撑。

  • 应用范围 药物研发与高通量筛选(HTS)、细胞活力检测、细胞增殖动力学监测:在不同血清浓度、生长因子、缺氧/氧化应激等培养条件下,定时检测ATP含量、细胞培养体系优化:评估培养基、血清、培养耗材等对细胞活力的影响
  • 产品特点

    极速检测:10 min出结果,比CCK-8缩短2-4 h,单日可完成3轮以上重复筛选;

    超高灵敏:即可检测较低细胞数量,高通量筛选(HTS)、原代/干细胞稀缺样本友好;

    宽线性窗:50-50,000细胞/孔仍保持R² ≥0.999,IC50偏差<3%,支持宽剂量药效曲线;

    信号持久:辉光型信号,半衰期长达3-7 h,光信号漂移<5%;

    操作极简:一步加样,无需洗涤、换液或停反应,适配实验室自动加样工作站;

    兼容性强:含血清、含DMSO(≤0.5%)、含抗生素培养液均可直接使用,溶剂干扰可空白扣除。

  • 产品组分

    组分

    C20401-100 T

    C20401-500 T

    C20401-5×500 T

    C20401-10×1000 T

    CellTiter-Live™ 3.0 Cell Viability Assay

    10 mL

    50 mL

    5×50 mL

    10×100 mL

    注:规格是以96孔板每孔5万细胞以内为例计算。
  • 结果判读

    1. 标准曲线对比:

    Luminescent细胞活力测定试剂盒(ATP)(C20401)与国内竞品B同时使用不同数量细胞绘制标准曲线效果对比,每孔细胞数量设置为0、625、1250、2500、5000、10000、50000和100000;与国外竞品P同时使用不同数量细胞绘制标准曲线效果对比,每孔细胞数量设置为31、63、125、250和500,不同种类细胞数量可能会有差异,下图数据仅供参考。

  • 1.问:结果检测时,可以在荧光显微镜下观察拍照吗?
  • 答:不可以。本试剂盒检测原理是化学发光法,需要用具有化学发光检测功能的仪器才能检测。
  • 2.问:为什么检测实验结果时,不需要选择检测波长?
  • 答:化学发光反应的检测指标并不来自样品本身。检测到的光信号,是作为反应的副产物产生的。在萤光素酶反应中(生物发光反应),萤光素酶催化底物转化为产物,反应中的一部分能量,以光的形式释放。我们检测中用到的样品,通常是真核生物来源的细胞或组织,来自样品自身的背景光非常低。这意味着,在萤光素酶检测中不需要滤除来自样品的任何光。萤光素酶反应的确会在某个特定波长下有最大的发光强度,但是萤光素酶反应的发光光谱通常都相当宽,在许多波长下都有发光。因此,如果只选择在最大波长处检测发光,过滤掉其他发光信号,意味着检测会丢掉很多信号,丢失灵敏度。所以大多数发光检测仪器会在检测发光反应时收集整个可见光谱(大约为380-780 nm)中的所有光。来确保在检测背景值低的同时有较高的灵敏度。
  • 3.问:没有做标准曲线,如何换算相对活力?
  • 答:可以将空白未加药处理组的检测结果设置成 1 或者 100%,然后将给药组获得的RLU 值和空白组的 RLU 值相比计算相对活力。
  • 本资料源自公开学术渠道,如需转载或引用,请联系原文作者获取授权。本页面内容仅作学术参考,不代表任何商业推荐或合作。

    质量   浓度   体积   分子量 *
    = × ×
    质量   浓度
    = ×
    体积   分子量 *
    ×
    浓度 (start) × 体积 (start) = 浓度 (final) × 体积 (final)
    × = ×
    浓度 (start) × 体积 (start) =
    × =
    浓度 (final) × 体积 (final)
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    分子量:g/mol
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