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Ethidium Monoazide Bromide (EMA)

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M10506 5 mg ¥799.00 100
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别名:Ethidium Monoazide Bromide
效能等同Biotium Ethidium Monoazide Bromide(EMA)

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实验操作小课堂

  • 问:死菌与活菌dCt小于1,可能是什么情况导致?
  • 答:原因如下,
    a.两个样本的Ct值均偏低,暗示所采用的杀菌条件可能未能达到理想效果,导致细菌未能彻底凋亡。而在95 ℃的高温加热处理下,几乎可以确信,细菌的细胞膜将遭受严重破裂,从而达到彻底灭菌的目的。
    b.这两个样本的Ct值均偏高(Ct值超过30),这或许表明您的细菌样本曾经经历过冷冻过程,导致活菌的细胞膜受到损伤,从而影响了检测结果的准确性。
  • 问:EMA跑HPLC为什么会出现双峰?
  • 答:由于本产品的特殊合成工艺,往往会导致同分异构体的生成,这些异构体之间在极性上存在微妙差异,从而在液相色谱分析中呈现出独特的双峰现象。尽管如此,经过我司严谨的科学验证,这两种同分异构体的EMA在生物活性上表现出了惊人的一致性—它们均能高效抑制死菌,且在抑制效率上毫无二致,确保了产品的卓越性能与稳定性。
  • 问:为什么光照交联最好选择蓝灯?
  • 答:在蓝光的照射下,光解效率显著提升。EMA分子中的光反应性叠氮基团,在蓝光(波长约为464 nm)的精准激活下,蜕变为一群高活性的氮烯自由基。这些如同勇士般的自由基,勇猛地搜寻并锁定DNA结合位点周边的烃基部分,与之激烈碰撞,进而铸就出坚固稳定的共价氮碳键。这一过程,无疑是EMA与DNA实现深度交联的核心环节,它不仅揭示了分子间的互动奥秘,也开启了光化学反应的新篇章。

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Ethidium Monoazide Bromide (EMA)
叠氮溴化乙锭(Ethidium Monoazide Bromide,EMA)

10 min光激活修饰,特异性区分活死菌,可用DNA功能研究

  • 储运条件 4℃ 避光保存;冰袋运输。
  • 产品简介 Ethidium Monoazide Bromide(EMA,叠氮溴化乙锭)是高亲和性DNA结合染料,对活细胞的通透性相对较低,可特异性标记死细胞内的DNA,使死细胞DNA与染料形成共价结合。核心优势为对活细胞细胞膜通透性低,10 min孵育及光解处理后,可特异性与死细胞内 DNA 形成共价结合,高效区分活死细胞。该染料不干扰活菌检测,且兼容qPCR精准定量,广泛适用于细菌样本检测。作为活死细胞区分关键工具,EMA突破传统分子生物学检测周期长、易高估细胞数量的局限,简化实验流程、降低生物安全风险,推动了微生物质控、食品检验临床诊断相关研究的精准化发展。
  • 应用范围 细菌活死状态鉴定,简单体系中活性微生物的定性分析,DNA足迹分析,修饰质粒DNA等
  • 产品特点

    qPCR兼容:10 min修饰死菌DNA,准确区分活死细胞,不干扰活菌检测,避免传统镜检假阴性;

    特异性高:几乎无法穿透活细胞膜,能特异性结合死细胞或细胞膜受损细胞的核酸;

    高效的光反应活性:光照下迅速光解生成高活性氮宾中间体,与核酸共价结合,稳定标记目标核酸;

    强荧光增强:相与核酸结合后荧光强度急剧提升,较于PMA非qPCR荧光观察场景适配性更优;

    应用场景广泛:涵盖质粒DNA修饰、DNA足迹分析、活死细菌区分等。

  • 产品参数

    外观:可溶于乙醇或DMSO的橙色固体;

    Ex (pH3):458 nm;

    Ex/Em:510/600 nm(after photocrosslinking to nucleic acid);

    CAS号:58880-05-0;

    分子式:C21H18BrN5

    分子量:420.31;

  • 产品组分

    组分

    1200 T

    A. Ethidium Monoazide Bromide (EMA)

    5 mg

    注:1200 T为试剂盒组分A以25 μM进行反应的总数。
  • 结果判读

    以活细菌和死细菌作为对照,分析计算样本中的活细胞数量。

    1. 计算死、活细菌对照dCt

    (1) qPCR实验结束后,用仪器自带软件计算每个样本的Ct值。

    (2) 通过计算每个对照细菌的dCt来判断EMA是否成功抑制了死细菌DNA的扩增,计算如下:

    dCt活=Ct(活, EMA 处理)-Ct(活, EMA 未处理)

    dCt死=Ct(死, EMA 处理)-Ct(死, EMA 未处理)

    (3) 活细菌dCt预期值接近0±1,这意味着EMA不会干扰活细胞DNA的扩增。

    (4) 死细菌的dCt预期值大于4(dCt为4时,代表死细菌DNA减少约16倍,即去除了94%;dCt为8时,减少约250倍,即去除了99.6%)。

    2. 计算活细菌占比

    当死、活细菌对照结果无异常,即可开展样本中活细菌占比的计算。

    (1) 样本dCt值的计算:

    dCt样本=Ct(样本, EMA 处理)-Ct(样本, EMA 未处理)

    (2) dCt值转换为活细菌比例:

    EMA抑制倍数=2(样本dCt)

    活细菌%=100/EMA抑制倍数

    3. 活细菌绝对数量的计算

    若要计算样本中活细菌的绝对数量,需用已知数量的目标菌基因组DNA绘制标准曲线。建议将几组基因组浓度稀释至qPCR分析体系的有效范围内。

    (1) 制作标准曲线,细胞数为横坐标,Ct值为纵坐标。

    (2) 实验样本拷贝数的计算:

    Ct=斜率*细胞数+y轴截距(y=mx+b)

    细菌数样本=(Ct-y轴截距)/斜率

    示例:下图,活/死大肠杆菌用25 μM EMA孵育后光解处理,然后提取gDNA,采用uidA引物进行扩增。

    注:建议先对引物及qPCR程序的适用性进行验证。 

    注:死细菌的dCt受多种因素影响,包含菌株系/细胞类型、细菌致死方式、EMA使用浓度以及扩增序列长度。 

    注:纯化过程中活细菌DNA未损失。 

    注:因不同仪器不同菌群检测结果会有差异,此结果仅供参考。

  • 问:死菌与活菌dCt小于1,可能是什么情况导致?
  • 答:原因如下,
    a.两个样本的Ct值均偏低,暗示所采用的杀菌条件可能未能达到理想效果,导致细菌未能彻底凋亡。而在95 ℃的高温加热处理下,几乎可以确信,细菌的细胞膜将遭受严重破裂,从而达到彻底灭菌的目的。
    b.这两个样本的Ct值均偏高(Ct值超过30),这或许表明您的细菌样本曾经经历过冷冻过程,导致活菌的细胞膜受到损伤,从而影响了检测结果的准确性。
  • 问:EMA跑HPLC为什么会出现双峰?
  • 答:由于本产品的特殊合成工艺,往往会导致同分异构体的生成,这些异构体之间在极性上存在微妙差异,从而在液相色谱分析中呈现出独特的双峰现象。尽管如此,经过我司严谨的科学验证,这两种同分异构体的EMA在生物活性上表现出了惊人的一致性—它们均能高效抑制死菌,且在抑制效率上毫无二致,确保了产品的卓越性能与稳定性。
  • 问:为什么光照交联最好选择蓝灯?
  • 答:在蓝光的照射下,光解效率显著提升。EMA分子中的光反应性叠氮基团,在蓝光(波长约为464 nm)的精准激活下,蜕变为一群高活性的氮烯自由基。这些如同勇士般的自由基,勇猛地搜寻并锁定DNA结合位点周边的烃基部分,与之激烈碰撞,进而铸就出坚固稳定的共价氮碳键。这一过程,无疑是EMA与DNA实现深度交联的核心环节,它不仅揭示了分子间的互动奥秘,也开启了光化学反应的新篇章。
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    质量   浓度   体积   分子量 *
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    浓度 (start) × 体积 (start) = 浓度 (final) × 体积 (final)
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