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Propidium Monoazide Bromide (PMA)

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M10507 1 mg ¥559.00 100
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别名:Propidium Monoazide
效能等同Biotium PMA(Propidium Monoazide)

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实验操作小课堂

  • 问:死菌与活菌dCt小于1,可能是什么情况导致?
  • 答:原因如下,
    a.两个样本的Ct值均偏低,暗示所采用的杀菌条件可能未能达到理想效果,导致细菌未能彻底凋亡。而在95 ℃的高温加热处理下,几乎可以确信,细菌的细胞膜将遭受严重破裂,从而达到彻底灭菌的目的。
    b.这两个样本的Ct值均偏高(Ct值超过30),这或许表明您的细菌样本曾经经历过冷冻过程,导致活菌的细胞膜受到损伤,从而影响了检测结果的准确性。
  • 问:PMA跑HPLC为什么会出现双峰?
  • 答:由于本产品的特殊合成工艺,往往会导致同分异构体的生成,这些异构体之间在极性上存在微妙差异,从而在液相色谱分析中呈现出独特的双峰现象。尽管如此,经过我司严谨的科学验证,这两种同分异构体的PMA在生物活性上表现出了惊人的一致性—它们均能高效抑制死菌,且在抑制效率上毫无二致,确保了产品的卓越性能与稳定性。
  • 问:为什么光照交联最好选择蓝灯?
  • 答:在蓝光的照射下,光解效率显著提升。PMA分子中的光反应性叠氮基团,在蓝光(波长约为464 nm)的精准激活下,蜕变为一群高活性的氮烯自由基。这些如同勇士般的自由基,勇猛地搜寻并锁定DNA结合位点周边的烃基部分,与之激烈碰撞,进而铸就出坚固稳定的共价氮碳键。这一过程,无疑是PMA与DNA实现深度交联的核心环节,它不仅揭示了分子间的互动奥秘,也开启了光化学反应的新篇章。

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Propidium Monoazide Bromide (PMA)
叠氮溴化丙锭(Propidium Monoazide Bromide,PMA)

10 min特异永久修饰死菌DNA,qPCR兼容,水溶性佳,无毒无漏检,多样本适用

  • 储运条件 4 ℃避光保存;冰袋运输
  • 产品简介 Propidium Monoazide Bromide(PMA,叠氮溴化丙锭)是精准区分活菌/死菌DNA的光敏染料,水溶性佳、无细胞毒性,操作简便。其原理为:PMA无法穿透完整细胞膜,仅进入死细胞与DNA结合;蓝光照射下,PMA叠氮基转化为自由基,与DNA形成稳定共价键,永久修饰死菌DNA,阻碍其PCR扩增;未结合的PMA则分解为无活性物质,避免干扰活菌检测。本产品仅需10 min孵育,即可高效区分活死细胞,死菌DNA去除率优于EMA,兼容qPCR定量,适用于细菌、酵母及粪便、食品等复杂样本。该技术解决了传统分子检测无法快速区分活死菌的局限,可用于活性菌群分析、食品益生菌定量、临床致病菌检测等场景。
  • 应用范围 细菌、酵母、真菌、病毒活死状态鉴定,活性微生物的精准定量与群落分析,土壤、水体、粪便等环境中活性微生物群落结构,食品致病菌残留,益生菌活菌计数,生物膜活性微生物检测等
  • 产品特点

    精准活死区分,不扰活菌:仅结合死菌DNA,不扰活菌代谢(可后续培养),定量准确率提升30%+,久经验证;

    PCR抑制效能标杆:死菌DNA去除率优于传统EMA,高浓度死菌样品定量偏差<5%,杜绝假阳 / 假阴性;

    厚壁微生物适配性强:成熟穿透技术,轻松解决革兰氏阳性菌、真菌等难破壁微生物活死区分痛点;

    10 min快速修饰:无需复杂前处理,四步标准化流程,10 min即可完成死菌DNA特异性修饰,适配批量检测;

    多平台兼容,信号稳定:适配PCR等传统及主流平台,荧光信号稳定,实验重复性高;

    水溶性佳,安全便捷:无需有机溶剂辅助溶解,操作简便且无细胞毒性干扰,降低实验风险;

    应用场景全面覆盖:覆盖细菌、酵母、真菌、寄生虫等微生物,适配粪便、土壤、食品、临床感染样本等复杂样本。

  • 产品参数

    外观:可溶于水或DMSO的红色固体;

    Ex:464 nm(before photolysis);

    Ex/Em:510/610 nm(following photolysis and reaction with DNA/RNA);

    分子式:C27H32Cl2N6

    分子量:511.5;

  • 产品组分

    组分

    200 T

    A. Propidium Monoazide Bromide (PMA)

    1 mg

    注:200 T为试剂盒组分A以25 μM进行反应的总数。
  • 结果判读

    以活细菌和死细菌作为对照,分析计算样本中的活细胞数量。

    1. 计算死、活细菌对照dCt

    (1) qPCR实验结束后,用仪器自带软件计算每个样本的Ct值。

    (2) 通过计算每个对照细菌的dCt来判断PMA是否成功抑制了死细菌DNA的扩增,计算如下:

    dCt活=Ct(活, PMA 处理)-Ct(活, PMA 未处理)

    dCt死=Ct(死, PMA 处理)-Ct(死, PMA 未处理)

    (3) 活细菌dCt预期值接近0±1,这意味着PMA不会干扰活细胞DNA的扩增。

    (4) 死细菌的dCt预期值大于4(dCt为4时,代表死细菌DNA减少约16倍,即去除了94%;dCt为8时,减少约250倍,即去除了99.6%)。

    2. 计算活细菌占比

    当死、活细菌对照结果无异常,即可开展样本中活细菌占比的计算。

    (1) 样本dCt值的计算:

    dCt样本=Ct(样本, PMA 处理)-Ct(样本, PMA 未处理)

    (2) dCt值转换为活细菌比例:

    PMA抑制倍数=2(样本dCt)

    活细菌%=100 / PMA抑制倍数

    3. 活细菌绝对数量的计算

    若要计算样本中活细菌的绝对数量,需用已知数量的目标菌基因组DNA绘制标准曲线。建议将几组基因组浓度稀释至 qPCR分析体系的有效范围内。

    (1) 制作标准曲线,细胞数为横坐标,Ct值为纵坐标。

    (2) 实验样本拷贝数的计算:

    Ct=斜率*细胞数+y轴截距(y=mx+b)

    细菌数样本=(Ct-y轴截距)/斜率

    示例:下图,活/死大肠杆菌用25 μM PMA孵育后光解处理,然后提取gDNA,采用uidA引物进行扩增。

    注:死细菌的dCt受多种因素影响,包含菌株系/细胞类型、细菌致死方式、PMA使用浓度以及扩增序列长度。

    注:纯化过程中活细菌DNA未损失。

    注:因不同仪器不同菌群检测结果会有差异,此结果仅供参考。

  • 问:死菌与活菌dCt小于1,可能是什么情况导致?
  • 答:原因如下,
    a.两个样本的Ct值均偏低,暗示所采用的杀菌条件可能未能达到理想效果,导致细菌未能彻底凋亡。而在95 ℃的高温加热处理下,几乎可以确信,细菌的细胞膜将遭受严重破裂,从而达到彻底灭菌的目的。
    b.这两个样本的Ct值均偏高(Ct值超过30),这或许表明您的细菌样本曾经经历过冷冻过程,导致活菌的细胞膜受到损伤,从而影响了检测结果的准确性。
  • 问:PMA跑HPLC为什么会出现双峰?
  • 答:由于本产品的特殊合成工艺,往往会导致同分异构体的生成,这些异构体之间在极性上存在微妙差异,从而在液相色谱分析中呈现出独特的双峰现象。尽管如此,经过我司严谨的科学验证,这两种同分异构体的PMA在生物活性上表现出了惊人的一致性—它们均能高效抑制死菌,且在抑制效率上毫无二致,确保了产品的卓越性能与稳定性。
  • 问:为什么光照交联最好选择蓝灯?
  • 答:在蓝光的照射下,光解效率显著提升。PMA分子中的光反应性叠氮基团,在蓝光(波长约为464 nm)的精准激活下,蜕变为一群高活性的氮烯自由基。这些如同勇士般的自由基,勇猛地搜寻并锁定DNA结合位点周边的烃基部分,与之激烈碰撞,进而铸就出坚固稳定的共价氮碳键。这一过程,无疑是PMA与DNA实现深度交联的核心环节,它不仅揭示了分子间的互动奥秘,也开启了光化学反应的新篇章。
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    质量   浓度   体积   分子量 *
    = × ×
    质量   浓度
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    体积   分子量 *
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    浓度 (start) × 体积 (start) = 浓度 (final) × 体积 (final)
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    浓度 (start) × 体积 (start) =
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    浓度 (final) × 体积 (final)
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